產(chǎn)品簡(jiǎn)介

bradford蛋白定量試劑盒產(chǎn)品內(nèi)容：

產(chǎn)品簡(jiǎn)介：

考馬斯亮蘭G-250染料，在酸性溶液中與蛋白質(zhì)結(jié)合，使染料的最大吸收峰的位置（Imax），由465nm變?yōu)?95nm，在一定的濃度范圍內(nèi)，測(cè)定的吸光度值A(chǔ)595與蛋白質(zhì)濃度成正比。Bradford法測(cè)定蛋白濃度不受絕大部分樣品中的化學(xué)物質(zhì)的影響，樣品中巰基乙醇的濃度可高達(dá)1M，二硫蘇糖醇的濃度可高達(dá)5mM，但受略高濃度的去垢劑影響，需確保SDS的濃度低于0.1%，Triton X-100低于0.1%，Tween 20, 60, 80低于0.06%。含去垢劑的樣品推薦使用索萊寶生產(chǎn)的BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒。

操作說(shuō)明：

一．微孔酶標(biāo)儀法 1.  溶解蛋白標(biāo)準(zhǔn)品，取10ul，稀釋至250ul ，使終濃度為0.2mg/ml。待測(cè)蛋白樣品在什么溶液中，標(biāo)準(zhǔn)品也宜用什么溶液稀釋。但是為了簡(jiǎn)便起見(jiàn)，也可以用0.9%NaCl或PBS稀釋標(biāo)準(zhǔn)品。 2.  5×G250染色液使用前請(qǐng)顛倒3-5次混勻，取1ml 5×G250染色液，加入4ml雙蒸水，混勻成1×G250染色液，此1×G250染色液可在4℃保存一周。 3.  將標(biāo)準(zhǔn)品按0,2,4,6,8,12,16,20微升分別加到96孔板中，加PBS稀釋液補(bǔ)足到20微升。 4. 將樣品作適當(dāng)稀釋（最好多做幾個(gè)梯度，如作2倍、4倍、8倍稀釋），加20微升到96孔板的樣品孔中。由于移液器在取小量時(shí)的誤差，標(biāo)準(zhǔn)線前面的點(diǎn)可能不很準(zhǔn)確，所以盡可能的讓樣品點(diǎn)落在標(biāo)準(zhǔn)線1/2后。 5. 各孔加入200微升稀釋后的1×G250染色液，室溫放置3-5分鐘。 6.  用酶標(biāo)儀測(cè)定A595，或560-610nm之間的其它波長(zhǎng)的吸光度。 7.  根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出樣品中的蛋白濃度。 二．分光光度計(jì)法 如無(wú)酶標(biāo)儀，染色反應(yīng)可在離心管中進(jìn)行，反應(yīng)液混勻后加入比色皿中，使用分光光度計(jì)測(cè)定吸光值。步驟如下：    1.  取八支（或者更多）干凈的10ml離心管，標(biāo)記上號(hào)。 2.  取100ulBSA加入PBS 2.4ml稀釋至終濃度為0.2mg/ml。 3. 5×G250染色液使用前請(qǐng)顛倒3-5次混勻，取10ml 5×G250染色液，加入40ml雙蒸水，混勻成1×G250染色液，此1×G250染色液可在4℃保存一周。

4.  按下表加入試劑(以每孔5ml計(jì)，多余的用來(lái)清洗比色皿)

5. 反應(yīng)3分鐘后測(cè)OD值。為了實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性，可每間隔2分鐘加一管染色液，每間隔2分鐘測(cè)一管OD值。如下表：

此圖為伯樂(lè)酶標(biāo)儀680，單波長(zhǎng)，570nm測(cè)得。室溫反應(yīng)三分鐘

備注：以上數(shù)據(jù)均來(lái)自公開(kāi)文獻(xiàn), Solarbio暫未進(jìn)行獨(dú)立驗(yàn)證, 僅供參考。These protocols are for reference only. Solarbio does not independently validate these methods.